近日,Nature Communications(IF=17.694)在线发表一项重磅研究,由武汉大学余毅团队、英国阿伯丁大学邓海团队联合主导,成功发现一种全新核糖体合成后修饰肽(RiPP)——Kintamdin,并解析其独特结构与全新生物合成途径,正式定义一类全新RiPP家族:β-双硫环肽(β-bithionins)。这一发现不仅填补了RiPP结构与酶学机制的空白,更为新型抗肿瘤肽药物开发提供了全新分子骨架。
一、研究背景:RiPP领域的“未竟之地”
核糖体合成后修饰肽(RiPP)是一类结构多样、活性优异的天然产物,广泛存在于微生物中,仅由20种标准氨基酸编码,却能通过翻译后修饰(PTM)形成复杂环化、非天然氨基酸等独特结构,是抗菌、抗肿瘤药物的重要来源。
但在已知RiPP中,含β-氨基酸、双硫醚大环的分子极为罕见,其合成酶与修饰机制长期未被解析。 同时,传统硫醚环(Lan、Lab、AviCys)的合成路径已相对清晰,但全新双硫醚环(MAbi)与β-烯胺酸(Aaa)的组合结构,在天然产物中从未被报道。
研究团队从加纳土壤链霉菌Streptomyces sp. RK44中,锁定一种未知分子量代谢物,开启结构解析与合成机制探索。
二、核心研究内容:从结构到合成,层层突破
1. Kintamdin结构解析:全新骨架首次亮相
研究团队通过高分辨质谱、NMR、基因组挖掘、AIMD分子动力学联合解析,确定化合物7为全新RiPP,命名Kintamdin。
Kintamdin整体结构示意图关键结构亮点:
- 含前所未有的双硫醚大环MAbi(methyl-amino-bithionin)
- 含罕见**(Z)-β-烯胺酸Aaa(3-amino-acrylic acid)**
- 含D-Ala、N,N-二甲基异亮氨酸、Dha、Dhb等多种修饰残基
- 对乳腺癌、皮肤癌细胞显示强选择性细胞毒性(乳腺癌IC₅₀=0.6±0.1 μM)
2. 已知RiPP硫醚环结构对比:确立独特性
文章系统对比已知硫醚环(Lan、Lab、AviCys、Avionin)的合成机制,明确Kintamdin的MAbi环不属于任何已知RiPP类型。
已知RiPP硫醚环与β-氨基酸结构对比- Lan/Lab:羊毛硫肽经典环,依赖Ser/Thr脱水→Cys加成
- AviCys/Avionin:依赖黄素蛋白脱羧酶与激酶同源蛋白协同
- Kintamdin MAbi:双Cys+Dhb形成双硫醚桥,合成路径完全新颖
3. 核心修饰位点与NOE远程耦合验证
通过NOE远程耦合与AIMD计算,确定MAbi环四个手性中心构型:11R、22αS、22βS、27S,是唯一匹配实验信号的立体结构。
Kintamdin一级结构与NOE远程耦合
4. 最小生物合成基因簇(BGC)鉴定:kin基因簇
基因组挖掘与异源表达、基因敲除验证,锁定15个基因组成的最小kin基因簇,其中4个核心酶负责关键后修饰:
kin基因簇结构与基因敲除质谱验证基因敲除结果:
- ΔkinC/ΔkinD:完全丧失Kintamdin合成
5. 脱水与环化两步核心反应解析
第一步:KinC+KinD组成双组分脱水酶
- 独特性:从N端 processive 催化,且能将Ser-7转化为β-烯胺酸Aaa
脱水反应体外共表达验证第二步:KinH+KinI协同催化MAbi双硫环形成
6. 核心肽段定点突变:关键残基功能验证
对前体肽核心区(CP)进行定点突变,明确:
- N端4个连续Thr(Thr2/3/4/6)协同调控Aaa形成
- Ser7可突变为Thr,酶仍可催化生成甲基-Aaa
- Cys11是MAbi环形成必需位点,突变则完全无法环化
前体肽定点突变结果
7. 完整生物合成途径模型:从线性肽到成熟分子
研究提出Kintamdin全合成路径:
- KinCD催化连续脱水,生成Aaa与全部Dha/Dhb
- KinHI协同催化C端Cys脱羧→双硫醚MAbi环化
- KinO催化N端二甲基化,生成成熟Kintamdin
Kintamdin完整生物合成途径
三、实验与分析方法流程总结
本文采用天然产物化学 + 合成生物学 + 结构生物学 + 计算化学多维度整合方案:
- 菌株发酵与化合物分离:10 L发酵→分离纯化得到Kintamdin(3 mg)
- 结构解析:HRMS、1D/2D NMR、Marfey法、AIMD辅助NOE解析
- 基因组挖掘:BLAST定位前体肽kinA,确定kin基因簇
- 基因操作:TAR克隆、异源表达、基因敲除、定点突变
- 体外共表达:大肠杆菌共表达验证酶功能(KinCD、KinHI)
- 质谱分析:UPLC-QTOF、FT-ICR MS、MS/MS碎片解析
四、结论与展望
核心结论
- 发现全新RiPP分子Kintamdin,含全球首例MAbi双硫醚大环与罕见β-烯胺酸Aaa
- 鉴定全新双组分脱水酶KinCD与双组分环化酶KinHI,酶同源性极低,代表全新催化机制
- 明确前体肽关键残基(N端Thr簇、Cys11、Ser7)对修饰的调控作用
- 基因组挖掘发现两类Kintamdin类似物,证明β-bithionins是广泛存在于放线菌的全新RiPP家族
研究意义
- 拓展RiPP结构多样性,填补β-氨基酸+双硫醚环的合成机制空白
- 为合成生物学改造RiPP提供全新酶工具与模块化思路
未来展望
- 解析KinCD/KinHI晶体结构,揭示Aaa与MAbi精准催化机制
- 扩大基因组挖掘,发现更多β-bithionins家族成员
论文信息
- 题目:A ribosomally synthesised and posttranslationally modified peptide containing a β-enamino acid and a macrocyclic motif
- DOI:10.1038/s41467-022-32774-3
- 武汉大学药学院(教育部组合生物合成与新药发现重点实验室)
- 英国爱丁堡大学、葡萄牙科英布拉大学、英国中央兰开夏大学等