分泌型溶酶体是免疫细胞的关键调控器,其糖苷酶分泌异常会引发免疫失衡、炎症、自身免疫病等疾病。传统检测方法需固定细胞,难以在活细胞状态下实时、定量监测酶分泌动态。
武汉大学黄卫华团队开发杂化纳米线-纳米吸管纳米传感器(HNS),结合人工底物特异性酶解策略,首次实现单个活巨噬细胞中四种关键溶酶体糖苷酶分泌的原位、实时、定量分析,揭示了溶酶体动态补给分泌以维持免疫稳态的新机制。相关工作以“Nanosensor Quantifying Lysosomal Glycosidase Secretion from Single Living Cells”为题发表在国际著名期刊Journal of the American Chemical Society上。

作者设计了一系列Glyco-PAP人工底物,分别靶向α-葡萄糖苷酶、β-葡萄糖苷酶、α-甘露糖苷酶和β-半乳糖苷酶。这些底物被糖苷酶特异性水解后,可一步释放具有电化学活性的对氨基苯酚(PAP),无需多步酶促转化,避免了内源活性氧(ROS)带来的干扰,显著提升检测准确性与动力学匹配度。传感器采用碳包覆碳化硅纳米线(SiC@C NWs)作为工作电极,具备优异导电性、机械强度与生物相容性,可对PAP实现高灵敏、高选择性安培检测。
团队构建纳米吸管+纳米线一体化杂化传感器:纳米通道精准将人工底物喷射至细胞吞噬杯区域,分泌的糖苷酶原位催化底物生成PAP,由纳米电极实时捕获电流信号。该系统实现高时空分辨率、单细胞、无损、实时定量检测,完整保留细胞生理活性与分泌过程。
以玻璃纳米纤维诱导巨噬细胞“受阻吞噬”为模型,研究证实溶酶体向吞噬杯定向迁移并大量释放糖苷酶。利用HNS在单细胞水平首次准确定量:β-半乳糖苷酶分泌活性最高(61.35 nU),β-葡萄糖苷酶次之(19.53 nU),α-甘露糖苷酶(13.41 nU)与α-葡萄糖苷酶(1.95 nU)较低,与天然免疫细胞溶酶体水解酶谱高度一致。加入特异性糖苷酶抑制剂后,电流信号显著下降,证明检测具有高特异性。
该研究首次实时观测到溶酶体糖苷酶补充分泌现象:初始分泌的酶被底物快速消耗后,细胞在约20分钟内启动新一轮分泌,活性约为初始的20%。活体成像显示,溶酶体从细胞远端向吞噬杯定向迁移、持续补给,揭示巨噬细胞通过动态分泌调控维持长期免疫清除功能,为理解免疫稳态提供了新机制。
与传统双酶偶联检测体系相比,本策略一步转化、无ROS干扰、灵敏度更高、准确性更好,可在复杂胞外微环境中精准识别糖苷酶信号。该工作突破了活细胞实时定量监测溶酶体分泌的技术瓶颈,建立了单细胞电化学检测新范式,可进一步拓展至多种溶酶体水解酶、胞外分泌蛋白的实时监测,为溶酶体功能研究、免疫疾病机制解析、药物筛选与诊疗提供创新工具与方法支撑。

图1.糖苷酶定量监测的示意图。

图2.使用混合纳米传感器对模拟糖苷酶释放进行电化学检测。
Nanosensor Quantifying Lysosomal Glycosidase Secretion from Single Living Cells
Yu-Ting Qi, Ru-Yan Zha, Xiao-Xiao Wang, Rui-Xue Gao, Ying Chen, Si-Yu Tian, Fu-Li Zhang, Xin-Wei Zhang, Wei-Hua Huang*
J. Am. Chem. Soc.
DOI: https://doi.org/10.1021/jacs.6c04507
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